--- title: "Vérifier massifs isotopiques, adduits et erreur en ppm dans le navigateur | Blog MolDraw" url: https://www.moldraw.com/fr/blog/mass-spectrum-viewer-guide.html description: "Guide pratique du visualiseur de spectres de masse gratuit de MolDraw : ouvrez des fichiers JCAMP-DX, CSV, mzML ou mzXML, superposez le massif isotopique d'une formule, vérifiez les adduits et l'erreur en ppm, et lisez les pertes de neutres." lang: fr publisher: Scidart Academy generated: 2026-10-26 --- # Vérifier massifs isotopiques, adduits et erreur en ppm dans votre navigateur Publié le 15 oct. 2026 · Auteur : Scidart Academy · Temps de lecture : ~6 min ![Spectre de masse IE du chlorobenzène avec l'ion moléculaire M à m/z 112, le pic M+2 à 114 dans un rapport 3:1 dû aux isotopes du chlore, et un fragment à 77](https://www.moldraw.com/blog/thumbs/mass-spec-viewer-guide.webp) Chlorobenzène : un atome de chlore donne des pics M et M+2 dans un rapport d'environ 3:1. **Réponse courte :** ouvrez le [visualiseur de spectres de masse MolDraw](https://www.moldraw.com/fr/tools/mass-spec-viewer/) gratuit et déposez un fichier JCAMP-DX, CSV/TXT, mzML ou mzXML. Tapez la formule, le SMILES ou le peptide attendu et choisissez l'ion. Le visualiseur superpose le massif isotopique théorique, liste les adduits courants présents, calcule l'erreur en ppm et étiquette les pertes de neutres. Exportez en PNG ou CSV. Le fichier est lu dans votre navigateur et n'est pas téléversé. ## Essayez le visualiseur de spectres de masse ici Cliquez pour charger le visualiseur dans cette page, ou [ouvrez le visualiseur de spectres de masse complet](https://www.moldraw.com/fr/tools/mass-spec-viewer/). Vos fichiers restent sur votre appareil. ## Pourquoi utiliser un visualiseur de spectres de masse dans le navigateur ? Un spectre de masse répond à deux questions : la masse est-elle correcte, et le massif correspond-il à la formule ? Le logiciel de l'instrument peut répondre aux deux, mais il est souvent limité à un seul PC. Les étudiants n'obtiennent parfois qu'une impression ou un fichier exporté. Ce visualiseur place le spectre mesuré et la théorie sur un même graphique. Vous voyez d'un coup d'œil si un massif du chlore est présent, si votre ion principal est [M+H]+ ou [M+Na]+, et quel écart sépare la masse mesurée de la masse calculée. ## Les bases de la spectrométrie de masse utiles ici **m/z** est la masse de l'ion divisée par sa charge. Pour les ions monochargés, elle est égale à la masse de l'ion. Un ion 2+ apparaît à environ la moitié de sa masse, et ses pics isotopiques sont espacés de 0,5. **L'ionisation** détermine ce que vous voyez. L'ionisation électronique (IE) donne un cation radical M+• et de nombreux fragments. L'électronébulisation (ESI) est plus douce et donne surtout [M+H]+, [M+Na]+ ou [M−H]−. Un adduit sodium se situe environ 22 au-dessus de [M+H]+, donc une paire de pics espacés de 22 est un indice fréquent. **Les massifs isotopiques** aident à confirmer la formule. Chaque carbone ajoute environ 1,1 % au pic M+1. Le chlore (35Cl et 37Cl) donne M et M+2 dans un rapport d'environ 3:1. Le brome (79Br et 81Br) donne environ 1:1. **L'erreur en ppm** compare un m/z mesuré et un m/z calculé : (mesuré − théorique) / théorique × 106. Pour la caféine [M+H]+ à m/z 195,0877, une erreur de 1 mDa correspond à environ 5 ppm. Cela n'a de sens que pour des données haute résolution. ## Fichiers pris en charge | JCAMP-DX | Spectres de masse .jdx, .dx ou .jcamp, sous forme de tables de pics ou de données continues. | | --- | --- | | CSV ou TXT | Colonnes de m/z et d'intensité. | | mzML et mzXML | Le premier spectre du fichier. Les tableaux compressés (zlib) fonctionnent dans les navigateurs actuels. | ## Comment comparer un spectre à une formule 1. Appuyez sur **Open mass spectrum** ou déposez le fichier dans la zone. Pour vous entraîner, appuyez sur **Caffeine ESI [M+H]+**. 2. Lisez la ligne au-dessus du graphique. Elle indique si les données sont en profil ou centroïdées, et si elles sont à résolution unitaire ou haute résolution. 3. Dans **Formula, SMILES or peptide**, choisissez le type d'entrée et tapez votre composé, par exemple C8H10N4O2. 4. Choisissez l'**Ion**, par exemple [M+H]+ pour l'ESI ou M+• (EI) pour l'IE. Laissez **Pattern** sur Auto resolution sauf si vous avez besoin d'un autre réglage. 5. Appuyez sur **Zoom to ion**. Comparez les bâtons rouges théoriques avec vos pics et lisez les colonnes Theory % et Found %. 6. Touchez le pic mesuré, ou sa ligne sous **Main peaks**, pour remplir **Measured m/z**. Lisez l'erreur en ppm. 7. Parcourez le tableau **Common adducts** pour repérer d'autres ions présents. 8. Exportez avec **Export PNG** ou **Export CSV**. ## Ce que fait le visualiseur | Tracé | Styles Auto, Stick ou Profile, Zoom, Pan, + et −, Reset view et Zoom to ion. Un curseur Labels règle le nombre de pics étiquetés. | | --- | --- | | Affichage | Base peak = 100%, Isotope overlay, Mirror (théorie en dessous) et Neutral losses peuvent chacun être activés ou désactivés. | | Calculateur | Formule, SMILES ou peptide en code à une lettre. Donne la masse monoisotopique, la masse moyenne (molaire), le m/z exact de l'ion choisi et le m/z le plus abondant. | | Ions | Adduits positifs et négatifs, dont [M+H]+, [M+Na]+, [M+K]+, [M+NH4]+, [M+2H]2+, [2M+H]+, [M−H]−, [M+Cl]− et [M+HCOO]−. | | Schéma | Auto resolution, Unit (nominale), High (0,01 Da) ou Fine structure. Une vérification des halogènes signale les massifs de Cl et Br. | | Vérifications | Erreur en ppm et en mDa, tableau des adduits courants avec les pics trouvés, et étiquettes de pertes de neutres entre les pics principaux. | | Exporter | PNG du graphique et CSV des données. Les données en profil reçoivent aussi une liste centroïdée. | ## Utilisations en cours et au laboratoire - **Enseigner les massifs des halogènes :** chargez **Chlorobenzene EI** et **Dibromobenzene EI**. Les étudiants voient les massifs 3:1 et 1:2:1 à côté de la théorie. - **Données de caractérisation :** vérifiez le m/z trouvé et calculé d'un nouveau composé avant de le rédiger. L'outil considère une erreur inférieure à 5 ppm comme une bonne correspondance pour des données haute résolution. - **Peptides :** chargez **Peptide ESI**, saisissez la séquence en code à une lettre et choisissez [M+2H]2+ ou [M+3H]3+ selon les états de charge. - **Lecture des fragments :** utilisez les étiquettes de pertes de neutres pour discuter des groupes qui se détachent en IE. Pour comparer avec un spectre attendu, [prédisez un spectre de masse IE à partir de votre dessin](https://www.moldraw.com/fr/blog/ai-spectroscopy-plugin-nmr-ms-uv-prediction.html) avec le plugin Spectroscopie, et considérez-le comme une estimation approximative. ## Conseils et limites - Saisissez la formule neutre et laissez le menu Ion ajouter ou retirer des atomes. Ne saisissez pas vous-même la formule de l'ion. - Pour mzML et mzXML, seul le premier spectre est affiché. Exportez le scan voulu s'il n'est pas le premier. - À résolution unitaire, des pertes différentes peuvent avoir la même masse nominale. CO et C2H4 donnent tous deux un écart de 28, donc les deux peuvent être listés. - Le lecteur SMILES couvre les SMILES organiques courants. Si l'un d'eux échoue, saisissez plutôt la formule. - Un bon accord isotopique conforte une formule mais ne prouve pas une structure. Utilisez aussi la RMN et l'IR. Débutant en spectrométrie de masse ? Notre guide [comment lire un spectre de masse](https://www.moldraw.com/guides/how-to-read-mass-spectrum/) explique les ions moléculaires, les fragments et les pics isotopiques. ## Questions et réponses ### Puis-je utiliser le visualiseur sans fichier de spectre ? Oui. Tapez une formule, un SMILES ou un peptide dans le calculateur et choisissez un ion. Vous obtenez la masse monoisotopique, la masse moyenne, le m/z exact et le massif isotopique sans ouvrir de données. ### Pourquoi l'ion moléculaire est-il faible ou absent dans mon spectre IE ? L'ionisation électronique à 70 eV laisse à l'ion beaucoup d'énergie en excès, si bien que de nombreux ions moléculaires se fragmentent avant d'atteindre le détecteur. Les alcools et les composés ramifiés en sont des exemples courants. Une méthode plus douce comme l'ESI ou l'IC montre généralement la molécule intacte. ### Pourquoi le pic le plus intense de mon massif n'est-il pas l'ion monoisotopique ? Chaque carbone a environ 1,1 % de chances d'être un 13C. Dans les grosses molécules comme les peptides, les ions qui contiennent un ou plusieurs atomes de 13C peuvent être plus nombreux que l'ion tout-12C. Le calculateur affiche à la fois le m/z exact et le m/z le plus abondant. ### Pourquoi l'outil indique-t-il qu'une erreur en ppm n'a pas de sens ? Votre fichier contient des masses à résolution unitaire, comme un spectre IE typique obtenu sur un quadripôle. Les valeurs de m/z sont des nombres entiers ou presque, donc une erreur en ppm ne vous apprend rien. Utilisez des données haute résolution pour les vérifications en ppm. ## Autres visualiseurs et guides de spectroscopie [Visionneuse de spectres de masse](https://www.moldraw.com/fr/tools/mass-spec-viewer/) [Comment lire un spectre de masse](https://www.moldraw.com/guides/how-to-read-mass-spectrum/) [Guide du visualiseur RMN](https://www.moldraw.com/fr/blog/nmr-spectrum-viewer-guide.html) [Guide du visualiseur IR](https://www.moldraw.com/fr/blog/ir-spectrum-viewer-guide.html) [Guide du visualiseur de protéines](https://www.moldraw.com/fr/blog/protein-structure-viewer-guide.html) [Visionneuse RMN](https://www.moldraw.com/fr/tools/nmr-viewer/) [Visualiseur IR](https://www.moldraw.com/fr/tools/ir-viewer/) [Visualiseur XPS](https://www.moldraw.com/fr/tools/xps-viewer/) [Visualiseur de protéines](https://www.moldraw.com/fr/tools/protein-viewer/) [Guide du visualiseur XPS](https://www.moldraw.com/fr/blog/xps-viewer-peak-fitting-guide.html) [Tous les outils](https://www.moldraw.com/fr/tools/) Dernière mise à jour : 15 octobre 2026